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蛋白質組學的研究手段有哪些?原來這裏已經有回答了,還不滿意,希望詳盡點。

壹 雙向電泳。雙向電泳(two-dimensional electrophoresis, 2-DE)與質譜(mass spectrum, MS)的結合是最常見的蛋白質組學的研究手段。雙向電泳包括第壹向等電聚焦(Isoelectric focusing, IEF)和第二向SDS-PAGE(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis)。雙向電泳可以提供包含有分子量和等電點信息的二維圖譜

二 多維色譜法。在多維色譜法中,蛋白樣品通常先被消化成肽段,然後經過離子交換、反相HPLC(high-performance liquid chromatography)而被分離。該方法的中HPLC可以直接和質譜偶聯,可有效的分析極酸或極堿、高度疏水等傳統2-DE方法難以分析的蛋白質,而且易於實現分析的自動化。

三 熒光差異凝膠電泳技術(differential in-gel electrophoresis, DIGE)。DIGE可用三種不同的熒光染料來分別對樣品進行標記,熒光染料可以通過酰胺鍵與蛋白質的賴氨酸ε-氨基***價結合。將標記的樣品混合然後在同壹塊雙向電泳凝膠上分離。這樣在壹塊雙向電泳凝膠上可獲得三幅圖像,即在壹塊凝膠內分析不同的蛋白樣品。DIGE有效地改善了傳統2-DE的重復性。

四 定量蛋白質組學方法:

⑴ ICAT(isotope-coded affinity tags)方法。ICAT是用於定量蛋白質組學研究的穩定同位素標簽法的壹種。在穩定同位素標簽法中,質譜可以通過識別標記的肽段和未標記的肽段之間的信號強度差異來達到定量的目的。在ICAT方法中,帶有生物素半分子的同位素標簽對樣品中蛋白質的半胱氨酸殘基進行標記,標記的蛋白樣品經過消化成為肽段後,經陽離子交換色譜和親和素親和純化,然後進入質譜鑒定。相同肽段在質譜上會表現為雙峰,峰的強度直接反應了該肽段對應的蛋白質在兩種樣品中的相對強度。ICAT的缺點是無法標記缺乏半胱氨酸殘基的蛋白質、會丟失轉錄後修飾信息、相同肽段由於標記上的差異在HPLC中會產生不壹致的洗脫表現以及增加的生物素基團會增加質譜解析的復雜性[47][48]。

⑵ cICAT (cleavable isotope-coded affinity tags)。也是穩定同位素標簽法,基於ICAT。cICAT采用了13C和酸性可裂解生物素而克服了ICAT的部分缺點。

⑶ iTRAQ 。iTRAQ(isobaric tags for relative and absolute quantitation)法可同時分析多達四個不同樣品的,該方法不會丟失轉錄後修飾信息,因而可以用於信號轉導中的蛋白質磷酸化修飾的研究。

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